成组t检验和配对t检验有什么分别?

一、适用条件不同：
1、成组t检验适用于非配对设计或成组设计两样本平均数差异显著性检验；
非配对设计或成组设计， 当进行只有两个处理的试验时，将试验单元完全随机地分成两个组，然后对两组随机施加一个处理。
两组的试验单位相互独立，所得的二个样本相互独立，其含量不一定相等。
每组资料近似正态分布（或大样本），满足方差齐性，则可采用成组t检验 。
2、配对t检验适用于配对设计两样本平均数差异显著性检验。
适用以下情况：
（1）同一样本接受不同处理的比较；
（2）对同一个受试对象处理前后的比较；
（3）将受试对象按情况相近者配对，分别给予两种不同处理，观察两种处理效果有无差别。
二、检验假设不同
1、成组t检验无效假设 H0：μ1= μ2；
备择假设 H1： μ1不等于 μ2。
2、 可将配对设计资料的假设检验可视为样本均数与总体均数μd=0的比较。
H0：μd=0（即差值的总体均数为0）；
H1：μd不为0（即差值的总体均数不为0）。


三、计算公式不同
1、成组t检验计算t值的公式：


2、配对t检验计算t值的公式：



四、检验效率不同
1、样本例数相同时，计量资料的成组检验比配对t检验检验效率低；
2、样本例数相同时，配对t检验效率高；因为采用配对方式，把一些对实验结果有影响的因素（如性别、体重等）进行匹配，消除了这些因素带来的干扰，降低了误差。
参考资料：
搜狗百科——t检验

生物学研究中，什么是TOPflash和FOPflash?

定义：
一种测定细胞内beta-catenin介导的转录活性的方法（经典wnt信号通路）！
最早由Hans Clevers实验室构建，但其信噪比不佳，后面由AjameteKaykas改良！
原理：
经典的Wnt信号通路需要beta-catenin入核，进而与转录因子TCF/LEF结合形成复合物，共同起始下游调控基因的转录。据此，科学家通过将数个拷贝的TCF/LEFDNA结合位点（AGATCAAAGGgggta，大写碱基为DNA结合序列，小写的碱基为间隔序列）克隆至含TA病毒最小启动子（minimalTA viral promoter ）的萤火虫荧光素酶报告系统载体中，构建得到TOP-Flash质粒。该质粒可依据beta-catenin的活性强弱，调控下游萤火虫荧光素酶的表达量高低。进而将实验简化为检测荧光素酶的活性。同时为了减少误差，该系统还设计了包含突变的TCF/LEFDNA结合位点的对照质粒，即FOP-Flash载体。
由于荧光素酶报告系统的高灵敏性，为了减少操作误差，我们在平时使用时，往往还需要连同一个表达海肾荧光素载体，作为内对照，从而消除细胞活力、转染效果、裂解效果等系统误差（同双荧光素酶报告基因检测系统）！具体的TOP或FOP质粒与海肾荧光素载体的比例，需要个人通过实验优化，通常取值的范围在10/1到50/1。
数据处理：
通常以TOP/FOP的比值表示。
公式如下：
转染有TOP-Flash和海肾荧光素载体的样本中采集得到的萤火虫荧光值F(Top)/采集得到的海肾荧光值R(Top)