pyrin基因序列的调取
进入NCBI数据库（http://www.ncbi.nlm.nih.gov），
选择pyrin种属来源，如人
选择基因亚型，需查阅文献（根据实验需求，并查阅文献发现pyrin亚型1与研究目的一致）
点击NM 000243.2，查找到基因pyrin的CDS区，
2F
克隆方法的选择
粘性末端克隆法
该方法需要在目的基因pyrin引物的5’端加上酶切位点，方法如下：
1. 酶切位点选择
1）pWPI-eGFP质粒中带有启动子EF-1α（与CMV启动子类似），双酶切可选择SwaⅠ与PmeⅠ或PacⅠ与PmeⅠ。注意不要选SwaⅠ与PacⅠ，因为双酶切时两个酶切位点的距离应相差在9bp以上。在这里，我们选用PacⅠ与PmeⅠ双酶切距离说明。
2）双酶切时，需要在酶切位点前面加上保护碱基，以保证最佳的酶切效率。选取酶切效率最高的保护碱基。
2. pyrin基因的引物设计
以PacⅠ与PmeⅠ双酶切为例，pyrin基因的上下游引物为
3. 设计好引物后，PCR扩增pyrin基因，跑胶回收PCR产物，PacⅠ与PmeⅠ双酶切pWPI质粒和pyrin基因，回收酶切产物，连接转化即可。
4. 挑取单克隆，验证，获得阳性克隆。
粘性末端克隆获得的重组质粒可用于瞬转，研究基因功能。但是，要长时间稳定过表达基因，就需要慢病毒包装，此时pWPI-eGFP中的cPPT/CTS需要保留，那么PmeⅠ就不适合进行酶切载体。此时就需要另外一种克隆方法——一步法克隆。
一步法克隆法
该方法需要在pyrin基因引物的5’端添加与pWPI载体末端相同的重叠序列，具体做法如下：
1. 酶切位点的选择
根据慢病毒包装的要求，pyrin基因需要插入在cPPT/CTS位点前面，此时载体的线性化可以通过SwaⅠ或PacⅠ单酶切实现。
2. pyrin基因的引物设计
1）重叠序列大小为15-20bp，酶切位点不计算在内；2）以PacⅠ单酶切为例，pyrin基因的上下游引物为：
3. 设计好引物后，PCR扩增pyrin基因，胶回收产物与载体酶切回收产物发生重组反应。
4 挑取单克隆，验证，获得阳性克隆。
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质粒构建成功后，转染细胞，观察是否表达
若进行稳转，后续还需使用该重组质粒包装慢病毒。注意事项
1、可通过GFP蛋白的表达情况，观察转染效率。若转染效率较低，可通过抗生素筛选，提高整合基因到基因组的细胞的纯度。因pWPI-eGFP质粒不带有哺乳动物细胞药物筛选基因，因此可以通过流式细胞术筛选，获得带有GFP阳性的细胞，使整合基因到基因组的细胞纯度提高。
2、还可以通过有限稀释法获得单个阳性克隆的细胞，避免在细胞传代过程中，由于细胞不断分裂，过表达的效果不断减弱造成的表型不明显现象的发生。
3、本案例较为特殊，对于其他过表达载体构建或慢病毒包装而言，一步法克隆方法与粘性末端克隆方法或许均可使用。